CEA |   |   |   |   |   |   | webmail : intra - extra |  Accès VPN-SSL | Contact | English

Les sujets de thèses

Dernière mise à jour : 27-03-2017

2 sujets IRAMIS

«««

• Chimie analytique

 

Développement d’un outil d’analyse et de diagnostic à haute performance utilisant la résonance magnétique et la fabrication additive

SL-DRF-17-0421

Domaine de recherche : Chimie analytique
Laboratoire d'accueil :

Service Nanosciences et Innovation pour les Materiaux, la Biomédecine et l'Energie (NIMBE)

Laboratoire Structure et Dynamique par Résonance Magnétique (LCF) (LSDRM)

Saclay

Contact :

Patrick BERTHAULT

Date souhaitée pour le début de la thèse : 01-10-2017

Contact :

Patrick BERTHAULT

CEA - DRF/IRAMIS/NIMBE/LSDRM

+33 1 69 08 42 45

Directeur de thèse :

Patrick BERTHAULT

CEA - DRF/IRAMIS/NIMBE/LSDRM

+33 1 69 08 42 45

Voir aussi : http://iramis.cea.fr/nimbe/Pisp/patrick.berthault/

Voir aussi : http://iramis.cea.fr/nimbe/lsdrm/

Voir aussi : http://iramis.cea.fr/Phocea/Vie_des_labos/Ast/ast.php?t=projets&id_ast=2194

Nous souhaitons dans ce projet de thèse mettre à profit nos avancées en hyperpolarisation et en microfluidique pour étudier par RMN des processus ou des organismes en fonctionnement. Deux axes de recherche, l’un dans le domaine de l’énergie, l’autre dans celui de la santé, seront traités :



i) l’étude des migrations de différentes espèces ioniques lors du fonctionnement d’une batterie redox à circulation. La modularité de notre système breveté de mini-pompe à bulle nous permettra de suivre par spectroscopie et imagerie différents isotopes en plusieurs positions de la batterie. Dans une deuxième étape, les composants et la géométrie seront adaptés aux cellules d'écoulement organique, le but principal étant de comprendre et d'analyser le mécanisme de dégradation et les produits de la molécule redox (dérivé anthraquinone) sur le cycle redox.



ii) grâce aux canaux de microfluidique, construits par impression 3D, nous pourrons introduire au cœur de l’aimant les dispositifs qui permettent de reproduire les conditions standard nécessaires à la culture cellulaire. Il deviendra donc possible de réaliser des mesures RMN permettant de suivre l’évolution temporelle de l’échantillon sur plusieurs heures en réponse à une sollicitation quelconque, sans que le métabolisme des cellules ne soit perturbé par le stress dû à leur manipulation préalable. Puisque nous développons des sondes gazeuses hyperpolarisées qui ont la propriété de conserver leur polarisation lors du transfert de la barrière cellulaire, nous poursuivrons ces études avec ces montages expérimentaux optimisés.

Matériaux poreux hybrides innovants pour l’analyse glycomique : de l’identification de biomarqueurs en milieu hospitalier au diagnostic médical.

SL-DRF-17-0549

Domaine de recherche : Chimie analytique
Laboratoire d'accueil :

Service Nanosciences et Innovation pour les Materiaux, la Biomédecine et l'Energie (NIMBE)

Laboratoire Edifices Nanométriques (LEDNA)

Saclay

Contact :

Laurent MUGHERLI

Martine Mayne

Date souhaitée pour le début de la thèse : 01-10-2017

Contact :

Laurent MUGHERLI

CEA - DRF/IRAMIS/NIMBE/LEDNA

0169089427

Directeur de thèse :

Martine Mayne

CEA - DRF/IRAMIS/NIMBE/LEDNA

01 69 08 48 47

Voir aussi : http://iramis.cea.fr/nimbe/Phocea/Membres/Annuaire/index.php?uid=lmugherl

Voir aussi : http://iramis.cea.fr/nimbe/ledna/

La structure et la fonction des protéines peuvent être modulées par de nombreuses modifications structurales. La glycosylation est une des principales modifications post-traductionnelles, car on estime qu’environ 50% des protéines eucaryotes sont glycosylées, cette proportion pouvant atteindre 70% pour les protéines humaines. La glycosylation d’une protéine correspond à l’attachement d’un monosaccharide ou d’une chaîne oligosaccharidique à un ou plusieurs acides aminés constitutifs d’une protéine donnée. Il est désormais bien établi que la glycosylation des protéines est fortement modifiée lors de diverses pathologies comme le cancer ou la polyarthrite rhumatoïde. Ainsi, la nature et les proportions relatives des oligosaccharides liés aux protéines pourraient être utilisées comme paramètres déterminants pour diagnostiquer, pronostiquer voire suivre le développement de pathologies.



L’analyse glycomique consiste à établir le profil des oligosaccharides présents sur l’ensemble des glycoprotéines présentes dans un fluide biologique d’intérêt. Des techniques modernes et pointues sont indispensables pour l’analyse à haut débit et le traitement des données, mais la préparation des échantillons, tout aussi importante, se fait encore avec des méthodes souvent très chronophages. L’objectif de cette thèse est de montrer que l’utilisation de matériaux innovants appliqués à la préparation d’échantillons pour l’analyse glycomique constitue un moyen pertinent pour accélérer significativement le débit des analyses, et d’employer ces matériaux dans des études en lien avec le milieu hospitalier afin d’identifier de nouveaux biomarqueurs de pathologies.



Le projet de recherche consistera en l'élaboration et la caractérisation de deux types de matériaux, l’un présentant une fonction catalytique, l’autre une fonction de filtration. Plusieurs aspects seront traités, allant de la synthèse des matériaux à la caractérisation de leurs propriétés texturales et physico-chimique. Les matériaux biohybrides nanoporeux seront synthétisés par le procédé Sol-Gel, selon différentes formulations et mises en forme. Les fonctions des matériaux mis au point seront évaluées dans un protocole d’analyse glycomique en vérifiant l’obtention de profils oligosaccharidiques de biofluides (e.g. plasma, liquide céphalorachidien). La caractérisation physique sera l’occasion de pratiquer des techniques variées, telles que la profilométrie, le MEB/MET, ou la caractérisation des paramètres de porosité par l’établissement d’isothermes d’adsorption de gaz. L’analyse des oligosaccharides sera réalisée par spectrométrie de masse (essentiellement MALDI-TOF).



Pour ce projet de thèse pluridisciplinaire, nous recherchons un(e) étudiant(e) chimiste ou physico-chimiste, intéressé(e) par la chimie des matériaux et motivé(e) par les applications de la recherche fondamentale dans le domaine des nouvelles technologies pour la santé. La thèse devra idéalement débuter en octobre 2017 et sera effectuée dans deux laboratoires, le laboratoire édifices nanométriques pour la partie matériaux et le laboratoire d’étude du métabolisme et du médicament pour l’utilisation des matériaux en analyse glycomique. L’activité de recherche sera menée dans le centre de recherche de Saclay (91).

 

Retour en haut